大鼠纤维母细胞；1/ej 1-1复苏操作流程：
1. 准备工作，开水浴锅，预热试剂，超净工作台紫外照射 30min,找到对应细胞在液氮罐中的位置
2. 紫外照射后风机吹 10min 后，酒精擦拭台面，放入试剂和离心管，取 15ml 离心管，加入 9ml 培养液
3. 在液氮罐中取出细胞，先拧松放液氮，再拧紧，将冻存管放入 pe 手套中，然后水浴融化后取出，1-2min
4. 将冻存管喷酒精后放入超净台内，擦干管壁，用 1ml 头将细胞转移到已加培养液的离心管中
5. 800-1000rpm 离心 5min,注意配平
6. 将离心好的细胞弃上清，加入 5ml *培养基重悬，用移液管吹打 8-10 次， 避免产生气泡，将细胞悬液接种到 10cm 培养皿中，补加 5ml 培养液
7. 混匀，十字法或者 8 字法
8. 将混好的细胞放入培养箱中培养 复苏操作要点：
1）将培养基在37℃水浴锅预热；准备一个15ml无菌的离心管，加入8ml预热培养基。
2）将冻存细胞从液氮罐中取出，快速放入37℃水浴锅中复温（可准备一洁净的烧杯，装满37℃的水，细胞冻存管取出后迅速放入烧杯内，再逐步转移到水浴锅中）。轻轻晃动冻存管，使细胞能在1~2min内*解冻，使细胞能尽快通过zui易受损的温度段（-5~0℃）。注意冻存管管口不能没入水中，brl(大鼠肝细胞)避免引起污染。
3）用75%酒精擦拭冻存管后再置于超净台内，将管内细胞转移至准备好的离心管内，轻轻吹打液体，使细胞均匀分散，降低dmso浓度，吹打时避免产生气泡。用新鲜培养基洗管壁2次，均转移至离心管内。
4）800rpm离心5min，弃上清，加入新鲜的培养基，吹打制成细胞悬液。
5）将细胞悬液转移至t25细胞瓶内，补加适量的培养基，轻轻晃动细胞瓶使细胞分布均匀，放入温箱内培养。
6）第二天观察细胞贴壁生长情况，换新鲜培养基以去除死细胞。继续培养，待细胞长至80~90%汇合时正常传代。一般刚复苏的细胞需经过2~3次传代，细胞活力恢复后才能进行后续的实验。