中华人民共和国农业行业标准(无公害食品猪肉)
2001-09-03发布 2001-10-01实施
中华人民共和国* 发布
前言
本标准的附录a、附录b、附录c、附录d、附录e、附录f为规范性附录。
本标准由中华人民共和国*提出。
本标准起草单位:南京农业大学、中国畜产品加工研究会。
本标准主要起草人:周光宏、徐幸莲、孙京新、汤晓艳、黄明、邹晓葵。
无公害食品 猪肉
1 范围
本标准规定了无公害猪肉的定义、技术要求、检验方法、标志、包装、贮存和运输。
本标准适用于来自非疫区的无公害生猪,屠宰后经兽医检疫合格的猪肉。
2 规范性引用文件
下列文件中的条款通过本标准的引用而成为本标准的条款。凡是注日期的引用文件,其随后所有的修改单(不包括勘误的内容)或修订版均不适用于本标准,然而,鼓励根据本标准达成协议的各方研究是否可使用这些文件的*新版本。凡是不注日期的引用文件,其*新版本适用于本标准。
gb 191 装储运图示标志
gb 2707 猪肉卫生标准
gb 4789.2 食品卫生微生物学检验 菌落总数测定
gb 4789.3 食品卫生微生物学检验 大肠菌群测定
gb 4789.4 食品卫生微生物学检验 沙门氏菌测定
gb 4789.17 食品卫生微生物学检验 肉与肉制品检验
gb/t 5009.11 食品中总砷的测定方法
gb/t 5009.12 食品中铅的测定方法
gb/t 5009.15 食品中镉的测定方法
gb/t 5009.17 食品中总汞的测定方法
gb/t 5009.19 食品中六六六、滴滴涕残留量的测定方法
gb/t 5009.44 肉与肉制品卫生标准的分析方法
gb/t 6388 运输包装收发货标志
gb 7718 食品标签通用标准
gb肉类加工厂卫生规范
gb/t食品中铬的测定方法
gb/t生猪屠宰操作规程
gb/t生猪屠宰产品品质检验规程
ny 467 畜禽屠宰卫生检疫规范
ny/t 468 动物组织中盐酸克伦特罗的测定 气相色谱——质谱法
ny/t 5033 无公害食品 生猪饲养管理准则
3 技术要求
3.1 原料
活猪必须来自按ny/t 5033规定组织生产的养猪厂,并经当地动物防疫监督机构检验合格。
3.2 屠宰加工
生猪屠宰按gb/t 17236和ny 467规定进行,屠宰加工过程中的卫生要求按gbl2694执行。
3.3 感官指标
感官指标应符合gb 2707的规定。
3.4 理化指标
理化指标应符合表1规定。
表1 无公害猪肉理化指标:
项 目 指 标
解冻失水率,% ≤ 8
挥发性盐基氮,mg/100g ≤ 15
汞(以hg计),mg/kg ≤ 按gb 2707
铅(以pb计),mg/kg ≤ 0.50
砷(以as计),mg/kg ≤ 0.50
镉(以cd计),mg/kg ≤ 0.10
铬(以cr计),mg/kg ≤ 1.0
六六六,mg/kg ≤ 0.10
滴滴涕,mg/kg ≤ 0.10
*,mg/kg ≤ 0.10
*,mg/kg ≤ 0.10
* 不得检出
磺胺类(以磺胺类总量计),mg/kg ≤ 0.10
*(脂肪中),mg/kg ≤ 0.02
盐酸克伦特罗 不得检出
3.5 微生物指标
微生物指标应符合表2规定。
表2 无公害猪肉微生物指标:
项 目 指 标
菌落总数,cfu/g ≤ 1×10的6次方
大肠菌群,mpn/100g ≤ 1×10的4次方
沙门氏菌 不得检出
4 检验方法
4.1 感官检验
按gb/t 5009.44规定方法检验。
4.2 理化检验
4.2.1 解冻失水率
按附录a规定方法测定。
4.2.2 挥发性盐基氮
按gb/t 5009.44规定方法测定。
4.2.3 汞
按gb/t 5009.17规定方法测定。
4.2.4 铅
按gb/t 5009.12规定方法测定。
4.2.5 砷
按gb/t 5009.11规定方法测定。
4.2.6 镉
按gb/t 5009.15规定方法测定。
4.2.7 铬
按gb/t 14962规定方法测定。
4.2.8 六六六、滴滴涕
按gb/t 5009.19规定方法测定。
4.2.9 *
按附录b规定方法测定。
4.2.10 *
按附录c规定方法测定。
4.2.11 *
按附录d规定方法测定。
4.2.12 磺胺类
按附录e规定方法测定。
4.2.13 *
按附录f规定方法测定。
4.2.14 盐酸克伦特罗
按ny/t 468规定方法测定。
4.3 微生物检验
4.3.1 菌落总数
按gb 4789.2检验。
4.3.2 大肠菌群
按gb 4789.3检验。
4.3.3 沙门氏菌
按gb 4789.4检验。
5 标志、包装、贮存、运输
5.1 标志:内包装(销售包装)标志应符合gb 7718的规定执行,外包装的标志应按gb 191和gb/t6388的规定执行。
5.2 包装:包装材料符合相应的国家食品卫生标准。
5.3 贮存:产品应贮存在通风良好的场所,不得与有毒、有害、有异味、易挥发、易腐蚀的物品同处贮存。
5.4 运输:应使用符合食品卫生要求的冷藏车(船),不得与有对产品发生不佳影响的物品混装。
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附 录 a
(规范性附录)
解冻失水率的测定
a.1 仪器和工具
电子秤:感量1g
温度计:一10摄氏度~50摄氏度,分度值1.5摄氏度。
a.2 抽样
从每批产品中随机抽取3~7件。样品在运输过程中应使用保温设备,以免解冻流失水分。
a.3 测定步骤
将铁丝网置于搪瓷盘内,并使铁丝网与搪瓷盘底部的距离大于2 cm。从抽取的样品中切取约1 000g~1 200g,用电子秤称量后置于铁丝网上。在样品上覆盖塑料膜,使样品在15摄氏度~25摄氏度自然解冻。待样品中心温度达到2摄氏度~3摄氏度时,用电子秤称量。再将样品置于铁丝网上放置30min称量,重复放置30min再称量,直*连续两次称量差不超过20g。
a.4 测定结果的表述
样品解冻失水率按式(a.1)计算:
x(%)= (m—m1 )÷m×100 …………………………………………(a.1)
式中:
x——样品解冻失水率,单位为百分率(%);
m——样品解冻前的质量,单位为克(g);
m1——样品解冻后的质量,单位为克(g)。
计算结果保留*整数。
a.5 允许差
同一样的两次测定值之差,不得超过平均值的5%。
ny 5029——2001
附 录 b
(规范性附录)
*残留的高效液相色谱测定法
b.1 适用范围
本方法用于测定鸡和猪的肌肉、肝脏、肾脏和脂肪组织中*的残留量。
b.2 原理
组织中*经mci—vaine—na2edta缓冲液(ph4.0)提取,过滤后,通过c18微柱水洗,用草酸甲醇将**洗脱,洗脱液用高效液相色谱仪进行测定。
b.3 可靠的检测限
本方法在肌肉、肝脏、脂肪和肾脏组织中的检测限为0.05µg/g。
b.4 仪器
b.4.1 高效液相色谱仪,配紫外检测器。
b.4.2 匀浆机。
b.4.3 离心机。
b.4.4 旋涡混合器。
b.4.5 自动电位滴定计。
b.4.6 磁力加热搅拌器。
b.4.7 c18微柱。
b.4.8 布氏漏斗。
b.4.9 球形漏斗。
b.4.10 滤膜;0.45/µm。
b.4.11 抽滤瓶。
b.5 药品和试剂
b.5.1 盐酸*标准品:纯度≥84%。
b.5,2 乙腈:色谱纯。
b.5.3 甲醇:分析纯。
b.5.4 乙酸铵:分析纯。
b.5.5 柠檬酸:分析纯。
b,5.6 依地酸二钠:分析纯。
b,5.7 *:分析纯。
b,5.8 草酸:分析纯。
b.5.9 三:分析纯。
b.5.10 n,n-二甲基甲酰胺:分析纯。
b.5.11 草酸铵:分析纯。
b.5.12 磷酸氢二铵:分析纯。
b.6 溶液
b.6.1*标准液:准确称取适量盐酸*,用甲醇溶解,使成浓度为100µg/ml的标准储备液,置冰箱保存。临用前,取此储备液,用甲醇依次稀释成浓度为5.0、2.0、1.0、0.5、0.25、0.1、0.05µg/ml的标准工作液。
b.6.2 mci—vaine缓冲液:准确称取na2hpo428.41g,用水溶解,定容于1000ml。容量瓶中,简称溶液a。准确称取柠檬酸21.00g,用水溶解,定容于1 000ml容量瓶中,简称溶液b。取625ml溶液a和1000ml溶液b混匀,调节ph*4.0土0.05。
b.6.3 mci—vaine—na2edta液:准确称取na2edta60.49g溶解于1 625ml的mci—vaine液中,使成0.0l mol/l na2edta的mci—vaine液。
b.6.4 0.01mol/l草酸甲醇溶液:准确称取草酸1.26g,用甲醇溶解并定容于1 000ml容量瓶中。
b.6.5 0.01 mol/l草酸溶液:准确称取草酸1.26g,用水溶解并定容于1 000ml容量瓶中。
b.7 分析
b.7.1 提取和纯化
b.7.1.1 称取5.00g组织匀浆放入50ml聚丙烯离心管中,添加tcs**,使成相应的浓度。
b.7.1.2 加入20mlmci—vaine—na2edta液,盖上帽,漩涡半分钟,手摇5 min。
b.7.1.3 4 500 r/min的速度离心10 min,上清液倒入另一离心管,再加入20 mlmci-vaine—na2edta液于沉淀中,漩涡半分钟,手摇5min。
b.7.1。4 4 500 r/min的速度离心5 min,上清液倒入上个试管中,再加入10 mlmci-vaine—na2edta液于沉淀中,漩涡半分钟,手摇5min。
b.7.1.5 4 500 r/min的速度离心5 min,混合全部上清液(共50 ml),4 500 r/min的速度离心10min。
b.7.7.6 用mci—vaine—na2edta液湿润抽滤瓶、布氏漏斗及滤纸,用较小真空(水泵)过滤上清液,2x2mlmci—vaine—na2edta液洗离心管并过滤。
b.7.1.7 c18 微柱先依次用20ml甲醇,20 ml水冲洗,之后将过滤的液体倒入50ml注射器中,用2×2mlmci—vaine—na2edta液洗抽滤瓶并放入注射器中。
b.7.1.8 过c18微柱,使tcs**吸附在c18微柱上。
b.7.1.9 用20ml水冲洗抽滤瓶倒入注射器中,并过滤,水洗c18微柱。
b.7.1.10 用水冲洗*后,顶空5min。
b.7.1.11 用6.0ml 0.01mol/l草酸甲醇液把tcs**从c18微柱中洗脱于10ml容量瓶中,用水定容*刻度。
b.7.1.12 上述液用滤膜过滤后,上高效液相色谱仪进行检测。
b.7.2 测定条件
b.7.2.1 色谱柱:c18柱。
b.7.2.2 流动相:甲醇—乙腈—0.01 mol/l草酸(1.5+1.5+2.0,ph=2.0)。
b.7.2.3 流速:1.5 ml/min。
b.7.2.4 检测波长:350nm。
b.7.2.5 进样量:10µl。
b.7.3 样品测定
分析样品按上述仪器操作条件供高效液相色谱仪分析。
b.7.4 计算
用色谱数据处理机或按式(b.1)计算试样中*残留量:
w = h.cs /hs.c ....................................(b.1)
式中:
w——试样中*残留量,单位为微克每克(µg/g);
h——试样液中*的峰高,单位为毫米(mm);
hs——标准工作液中*的峰高,单位为毫米(mm);
cs——标准工作液中*的浓度,单位为微克每毫升(µg/ml);
c——*终试样液所代表的试样的浓度,单位为克每毫升(g/ml)。
注:计算结果需扣除空白值。
ny 5029——2001
附 录 c
(规范性附录)
*残留的高效液相色谱测定法
c.1 适用范围
本方法用于测定动物可食性组织中*的残留量。
c.2 原理
组织经mci—vaine—na2edta缓冲液(ph4.0)提取,过滤后,通过c18微柱水洗后,用草酸甲醇将**洗脱,洗脱液用高效液相色谱仪进行检测。
c.3 可靠的检测限
本方法在动物可食性组织中的检测限为0.05µg/g。
c.4 仪器
c.4.1 高效液相色谱仪,配紫外检测器。
c.4.2 匀浆机。
c.4.3 离心机。
c.4.4 漩涡混合器。
c.4.5 自动电位滴定计。
c.4.6 磁力加热搅拌器。
c.4.7 c18微柱。
c.4.8 布氏漏斗。
c.4.9 球形漏斗。
c.4.10 滤膜:0.45µm。
c.4.11 抽滤瓶。
c.5 药品和试剂
c.5.1 盐酸*标准品:纯度≥90%。
c.5.2 乙腈:色谱纯。
c.5.3 甲醇:分析纯。
c.5.4 乙酸铵:分析纯。
c.5.5 柠檬酸:分析纯。
c.5.6 依地酸二钠:分析纯。
c.5.7 *:分析纯。
c.5.8 草酸:分析纯。
c.5.9 三:分析纯。
c.5.10 n,n—二甲基甲酰胺:分析纯。
c.5.11 草酸铵:分析纯。
c.5.12 磷酸氢二铵:分析纯。
c.6 溶液
c.6.1*标准液:准确称取适量盐酸*标准品,用甲醇配成浓度为100µg/ml的标准储备液,置冰箱中保存。临用前,取此储备液,用甲醇依次稀释成浓度为5.0、2.0、1.0、0.5、0.25、0.1、0.05µg/ml的标准工作液。
c.6.2 mci—vaine缓冲液:准确称取na2hpo428.41g,用水溶解,定容于1000ml容量瓶中,简称溶液a。准确称取柠檬酸21.00g,用水溶解,定容于1 000ml容量瓶中,简称溶液b。取625ml溶液a和1000ml溶液b混匀,调节ph*4.04-0.05。
c.6.3 mci—vaine—na2edta液:准确称取na2edta60.49g溶解于1625ml的mci—vaine液中,使成含0.01mol/lna2edta的mci—vaine液。
c.6.4 0.01 mol/l草酸甲醇:准确称取草酸1.26g,甲醇溶解并定容于1 000ml容量瓶中。
c.6.5 0.01 mol/l草酸溶液:准确称取草酸1.26g,水溶解并定容于1 000ml容量瓶中。
c.7 分析
c.7.1 提取和纯化
c.7.1.1 称取5.00g组织匀浆(**到0.1g)放入50ml聚丙烯离心管中,添加tcs**,使成相应的浓度。
c.7.l 2 加20mlmci—vaine—na2edta液,盖上帽,漩涡半分钟,手摇5min。
c.7.1.3 以4 500 r/min的速度离心10 min,上清液倒入另一离心管,再加20 mlmci—vaine—na2edta液于沉淀中,漩涡半分钟,手摇5 min。
c.7.1.4 以4 500 r/min的速度离心5 min,上清液倒入上个试管中,再加10 mlmci—vaine—na2edta液于沉淀中,漩涡半分钟,手摇5 min。
c.7.1.5 以4 500r/min的速度离心5min,混合全部上清液(共50ml),以4 500r/min的速度离心10min。
c.7.1.6用mci—vaine—na2edta液湿润抽滤瓶、布氏漏斗及滤纸,用较小真空(水泵)过滤上清液,2×2mlmci—vaine—na2edta液洗离心管并过滤。
c 7.1.7 c18微柱先依次用20me甲醇,20ml水冲洗,之后将过滤的液体倒入50ml注射器中,用2×2mlmci—vaine—na2edta液洗抽滤瓶并放人注射器中。
c.7.1.8 过c18微柱,使tcs**吸附在c18微柱上。
c.7.1.9 用20ml水冲洗抽滤瓶倒人注射器中,并过滤,水洗c18微柱。
c.7.1.10 用水冲洗*后,顶空5min。
c.7.1.11 用6.0ml 0.01mol/l草酸甲醇液把tcs**从c18微柱中洗脱于10ml容量瓶中,用水定容*刻度。
c 7.1.12 上述液用滤膜过滤后,供高效液相色谱仪进行检测。
c.7.2 测定条件
c 7.2.1 色谱柱:c18柱。
c,7.2.2 流动相:甲醇—乙腈—0.01 mol/l草酸(1.5+1.5+2.5)。
c 7.2.3 流速:1.5 ml/min。
c 7.2.4 检测波长:350nm。
c.7.2.5 进样量:10µl。
c 7.3 样品测定
分析样品按上述仪器操作条件供高效液相色谱仪分析。
c.7.4 计算
用色谱数据处理机或按式(c.1)计算试样中*残留量:
w=h.cs / hs .c …………………………•(c.1)
式中:
w——试样中*残留量,单位为微克每克(µg/g);
h——试样液中*的峰高,单位为毫米(mm);
hs——标准工作液中*的峰高,单位为毫米(mm);
cs——标准工作液中*的浓度,单位为微克每毫升(µg/ml);
c——*终试样液所代表的试样的浓度,单位为克每毫升(g/ml)。
注:计算结果需扣除空白值。
ny 5029——2001
附 录 d
(规范性附录)
*残留的气相色谱测定法
d.1 适用范围
本方法用于测定肉牛的肌肉组织中*的残留量。
d.2 原理
组织经β—葡萄糖醛酸酶消化,经乙酸乙酯提取,然后将乙酸乙酯浓缩。加4%氯化钠溶液,剩余的乙酸乙酯用氮气吹干。将盐溶液过c18萃取小柱,用20%甲醇洗涤,用甲醇洗脱。将洗脱液蒸发*干并固化,用配有电子捕获检测器的气相色谱仪测定*。异*做内标物定量。
d.3 可靠的检测限
本方法在牛肌肉组织中的检测限为1.0ng/g。
d.4 仪器
d.4.1 气相色谱仪,配电子捕获检测器(63ni)。
d.4.2 电子天平:感量0.000 01g。
d.4.3 匀浆机。
d.4.4 离心机。
d.4.5 旋转蒸发仪。
d.4.6 振荡器。
d.4.7 电热恒温水浴锅。
d.4.8 固相萃取柱:c18柱。
d.5 药品与试剂
d.5.1 *标准品:纯度≥99%。
d.5.2 异*标准品:内标物。
d.5.3 p—葡萄糖醛酸酶—ⅸ:生化试剂。
d.5.4 甲醇:色谱纯。
d.5.5 乙酸乙酯:分析纯。
d.5.6 正己烷:分析纯。
d.5.7 三氯甲烷:分析纯。
d.5.8 乙腈:色谱纯。
d.5.9 环己烷:分析纯。 ,
d.5.?0 氯化钠:分析纯。
d.6 溶液
d.6.1*标准液:准确称取*50mg,用甲醇溶解,使成浓度为500µg/ml的标准储备液,置4摄氏度冰箱中保存。临用前,取此储备液,用甲醇稀释成浓度为100ng/ml的标准工作液。
d.6.2异*标准液:准确称取异*50mg,用甲醇溶解,使成浓度为500µg/ml的标准储备液,置4摄氏度冰箱中保存。临用前,取此储备液,用甲醇稀释成浓度为100ng/ml的内标液。
d.6.3 0.1 mol/l kh2p04和na2hpo4的缓冲液(ph6.8土0.1):用相应的干试剂调节ph为6.8。
d.6.4 β—葡萄糖醛酸—ⅸ:用缓冲液稀释*4 000单位/ml。
d.6.5 sylon htp溶液:六甲基二硅烷(hmds)3份,氯化**基硅烷1份,吡啶9份。
d.7 分析
d.7.1 提取和纯化
d.7.1.1 将组织解冻,称取肌肉组织10g(**到0.1g),置于50ml玻璃离心管中。向每个样品中加10µl异*内标液(100ng/ml)。
d.7.1.2每个分析样品配制1个空白、3个添加样品。向空白组织中加内标。回收率样品中加工作液,制成0.5ml/l(50µl工作液),1.0ml/l(100µl工作液),2.0ml/l(200µl工作液)的样品。由添加样品得到的数据用于计算。
d.7.1.3向所有空白、添加对照和样品管中加15ml磷酸盐缓冲液(ph6.8土0.1)和200µlβ—葡萄糖醛酸酶(800单位),在室温条件下混合30s一60s。
d.7.1.4 将所有管置于37摄氏度保温90min。保温后,样品可以放在冰箱中过夜。
d.7.1.5 样品放回室温平衡。向各管加乙酸乙酯15ml,旋涡混合30s提取*。
d.7.1.6 2 000r/min的速度离心2min。
d.7.1.7 用一次性滴管吸取乙酸乙酯液(上层)留用并转移到另一干净的50ml离心管中。
d.7.1.8 重复(步骤d.7.1.5~d.7.1.7)提取样品,并合并提取液。
d.7.1.9 在氮气流下,用温度约60摄氏度的沙浴去除乙酸乙酯使体积约为1 ml。
d.7.1.10 向各管加4%氯化钠溶液4ml,混合5s~10s。
d.7.1.11 继续蒸发去除乙酸乙酯*乙酸乙酯层干,剩下小量的油性残留物。
d.7.1.12 向4%氯化钠溶液层加正己烷4ml,混合10s。2 000r/min的速度离心1 min,弃掉上层。
d.7.1.13 重复步骤d.7.1.12。
注意:以下步骤d.7.1.14*步骤d.7.1.17必须立即连续做完。切莫让吸附剂变干。
d.7.1.14给每个样品、空白和添加对照准备一根c18柱,顺序用5ml甲醇、5ml三氯甲烷、5ml甲醇和10ml水洗涤c18柱。弃掉洗涤液。
d.7.1.15 用一次性巴氏吸管吸取全部水相溶液装入c18柱过柱,弃掉流出液。
d.7.1.16 用1ml水混合淋洗样品管2遍,并将淋洗液加入c18柱过柱,弃掉流出液。
d.7.1.17 用1 ml水,然后2ml甲醇—水(2+8)洗涤c18柱。让*后一次洗涤液*流出c18柱。弃掉 洗液。
d.7.1.18 用乙腈将c18柱中的*洗脱,洗脱2次,每次1.5ml,合并洗脱液到一干净的10ml培养管中。
d.7.1.19 在氮气流下,用温度约60摄氏度的沙浴蒸发去除乙腈*约为0.5ml。
d.7.1.20 转移*1ml锥形瓶中。用0.5ml乙腈洗涤10ml培养管,旋涡混合5s,并将洗涤液加到1ml锥形瓶中。在60~c用氮气流吹干。
注意:从这儿开始要防潮。
d.7.1.21 向干的残留物中加200µl sylon htp。
d.7.1.22 盖塞并旋涡混合5s。在60摄氏度~70摄氏度沙浴中反应15min。
d.7.1.23 在60摄氏度用氮气流吹干去除多余的试剂蒸发*10µl。
注意:此步过长的吹干时间可导致丢失分析物。
d.7.1.24 将残留物重新溶于100/µl 环己烷—正己烷(6+4)中,旋涡混合5s。
d.7.1.25 注入适量微升体积的衍生物到气相色谱仪作定量测定。
d.7.2 测定条件
d.7.2.1 色谱柱:db—1,30m×0.254mm i.d.。
d.7.2.2 载气:氦气,线性速度29cm/s。
d.7.2.3 初始柱温:80摄氏度,维持1min。
d.7.2.4温度程序:设定30摄氏度/min升*260~c,维持10min或直到对位异构体和*已经流出。然后设定30摄氏度/min升*300摄氏度,维持5min以确保所有的样品已经流出。
d.7.2.5 进样室温度:280~c。
d.7.2.6 检测器温度:350摄氏度。
d.7.2.7 预期保留时间:*10min—11 min,异*9.5min—10.5min。
d.7.2.8 预期响应值:对0.2ng*可以达到50%全刻度。
d.7.2.9 进样量:适量。
d.7.3 样品测定
分别注入适量标准工作溶液及适当浓度的样品溶液于气相色谱仪中,按上述色谱条件进行色谱分析。响应值均应在仪器检测的线性范围之内。
d.7.4 计算
用色谱数据处理机或按式(d.1)计算试样中*残留量:
w= w=h.cs / hs .c ………………………………(d.1)
式中:
w——试样中*残留量,单位为微克每克(µg/g);
h——试样液中*的峰高,单位为毫米(mm);
hs——标准工作液中*的峰高,单位为毫米(mm);
cs——标准工作液中*的浓度,单位为微克每毫升(µg/ml);
c——*终试样液所代表的试样的浓度,单位为克每毫升(g/ml)。
注:计算结果需扣除空白值。
ny 5029——2001
附 录 e (规范性附录)
磺胺类**在动物可食性组织中
残留的高效液相色谱检测方法
e.1 适用范围
本方法用于测定动物可食性组织中*(smm)、*(sm2)、磺胺甲恶唑(smz)、磺胺二甲氧嘧啶(sdm)、*(sq)单个或混合物的残留量。
e.2 原理
组织经乙腈提取后,其上清液再加入正己烷,向离心后的下层溶液加入正丙醇,减压干燥后的残留物用乙腈溶解,过sep—pak氧化铝b柱,洗脱液再用正丙醇处理,减压干燥后的残留物经流动相溶解后,所制样液用高效液相色谱仪进行检测。
e.3 可靠的检测限
本方法在动物可食性组织中的检测限为0.05µg/g。
e.4 仪器
e.4.1 高效液相色谱仪,配紫外检测器。
e.4.2 匀浆机。
e.4.3旋转蒸发仪。
e.4.4 磁力搅拌器。
e.4.5 电子天平:感量0.000 01g。
e.4.6 离心机。
e.4.7 振荡器。
e.4.8 抽滤器。
e.4.9 离心管。
e.5 药品和试剂
e.5.1 smm,sm2,smz,sdm,sq标准品:纯度≥99%。
e.5.2 乙腈:色谱纯。
e.5.3 甲醇:分析纯,经重蒸馏。
e.5.4 乙酸:分析纯。
e.5.5 正己烷:分析纯,经重蒸馏。
e.5.6 正丙醇:分析纯,经重蒸馏。
e.5.7 *:分析纯。
e.6 溶液
磺胺类**标准液;准确称取适量各个磺胺药,用甲醇溶解,配制成适当浓度的标准储备液。临用前,取此储备液,用流动相稀释成浓度为0.1µg/ml~20µg/ml的标准工作液。
e.7 分析
e.7.1 sep—pak氧化铝b柱的制备
称取高温下加热3h的氧化铝粉,加水搅拌均匀,振荡3h后填充人玻璃柱中,用95%乙腈5ml前处理后备用。
e.7.2 提取和纯化
称取组织样品5g(**到0.1 g),加入乙腈25ml,*少许(血**外),匀浆后,以3000r/min的速度离心5min。分离后的残渣再用25ml乙腈处理,振荡10min后,以3000r/min的速度离心5min。合并两次的上清液,加入正己烷30ml,振荡10min后,以3000r/min的速度离心5min,取下层液体,加人正丙醇10ml,50摄氏度下减压干燥,残留物用95%乙腈3ml溶解,过sep—pak氧化铝b柱。用95%乙腈5ml过柱,不收集,再用70%乙腈10ml洗脱后,洗脱液中加入5ml正丙醇,50c下减压干燥后,残留物用2.0ml流动相溶解,所制样液用高效液相色谱仪进行检测。
e.7.3 检测条件
e.7.3.1 色谱柱:c18柱,250mm×4.6mm i.d.。
e.7.3.2 流动相:乙腈—甲醇—水—乙酸(2+2+9+0.2)。
e.7.3.3 流动相流速:1.0ml/min。
e.7.3.4 检测波长:270nm。
e.7.3.5 进样量:20µl。
e.7.4 样品测定
分别将等体积标准液和试样溶液注入液相色谱仪,标准工作液及试样中磺胺类**的响应值均应在仪器检测的线性范围之内。试样液测定过程中要参插注入标准工作液,以便准确定量。
e.7.5 计算
用色谱数据处理机或按式(e.1)计算试样中磺胺类**残留量:
w=h.cs / hs .c ……………………………………………………(e.1)
式中:
w——试样中磺胺类**残留量,单位为微克每克(µg/g);
h——试样中磺胺类**峰高,单位为毫米(mm);
hs——标准工作液中磺胺类**峰高,单位为毫米(mm);
cs——标准工作液中磺胺类**浓度,单位为微克每毫升(µg/ml);
c——*终试样液所代表的试样浓度,单位为克每毫升(g/ml)。
注:计算结果需扣除空白值。
ny 5029——2001
附 录 f
(规范性附录)
*残留的高效液相色谱测定法
f.1 适用范围
本方法用于测定牛、羊、猪肝脏、肌肉和脂肪组织中*的残留量。
f.2 原理
组织中*经乙腈提取后用c18固相萃取柱净化,在三酐和n—甲基咪唑存在下,脱水生成荧光化合物,用高效液相色谱仪进行测定。
f.3 可靠的检测限
本方法在动物可食性组织中的检测限为2ng/g。
f.4 仪器
f.4.1 高效液相色谱仪,配荧光检测器。
f.4.2 匀浆机。
f.4.3 离心机。
f.4.4 旋转蒸发仪或氮气吹蒸装置。
f.4.5 旋涡混合器。
f.4.6 spe柱(c18柱,6ml)。
f.5 药品和试剂
f.5.1 *标准品:纯度≥90%。
f.5.2 乙腈:色谱纯。
f.5.3 甲醇;色谱纯。
f.5.4 n—甲基咪唑:纯度≥99%。
f.5.5 三酐:纯度≥99%。
f.6 溶液
f.6.1*标准液:准确称取适量*标准品,用甲醇溶解,使成浓度为100µg/ml的标准储备液,置一20摄氏度冰箱中保存,可保存一年。临用前,取此储备液,用甲醇稀释成适当浓度的标准工作液。
f.6.2 水—乙腈溶液(9+1)。
f.6.3 三酐-乙腈溶液(1+2)。
f.6.4 n-甲基咪唑-乙腈溶液(1+1)。
f.7 分析
f.7.1 提取和纯化
称取4.0g组织(**到0.1g),加入40ml乙腈,高速匀浆2min,将样品转*离心管中,以20000r/min的速度离心10min,沉淀物用乙腈(20ml×2)重复提取2次,离心后合并提取液,用旋转蒸发仪(60~c)将提取液浓缩蒸去乙腈,向残留物中添加10ml水,摇匀。
将c18预柱依次用4ml乙腈和4ml水—乙腈溶液平衡,使样品液通过c18柱(1ml/min),吹去柱内残留的液体,用5ml乙腈洗脱柱内吸附的*,用旋转蒸发仪蒸去溶剂。向残留物中依次加入150µl三酐-乙腈溶液和100µln- 甲基咪唑 - 乙腈溶液,轻轻摇匀后密闭、避光存放,30s后即可供高效液相色谱仪测定。
f.7.2 测定条件
f.7.2.1 色谱柱:c18柱,150mm×4.6mm i.d.,粒度5µm。
f.7.2.2 流动相:甲醇 - 水(95+5)。
f.7.2.3 流动相流速:1.5ml/min。
f.7.2.4 荧光检测:激发波长364nm,发射波长470nm。
f.7.2.5 进样量:10µl。
f.7.3 样品测定
将分析样品按上述操作条件供高效液相色谱仪分析。
f.7.4 计算
用色谱数据处理机或按式(f.1)计算试样中*残留量:
w=h.cs / hs .c .....................................(f.1)
式中:
w——试样中*残留量,单位为微克每克(µg/g);
h——试样液中*的峰高,单位为毫米(mm);
hs——标准工作液中*的峰高,单位为毫米(mm);
cs——标准工作液中*的浓度,单位为微克每毫升(µg/ml):
c——*终试样液所代表的试样的浓度,单位为克每毫升(g/ml)。
注:计算结果需扣除空白值。
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