肿瘤细胞使用说明：
对于培养细胞样品：
1. 融解ripa裂解液，混匀。取适当量的裂解液，在使用前数分钟内加入pmsf，使pmsf的z终浓度为1mm。
2. 对于贴壁细胞：去除培养液，用pbs、生理盐水或无血清培养液洗一遍（如果血清中的蛋白没有干扰，可以不洗）。按照6孔板每孔加入150-250微升裂解液的比例加入裂解液。用枪吹打数下，使裂解液和细胞充分接触。通常裂解液接触细胞1-2秒后，细胞就会被裂解。
对于悬浮细胞：离心收集细胞，用手指把细胞用力弹散。按照6孔板每孔细胞加入150-250微升裂解液的比例加入裂解液。再用手指轻弹以充分裂解细胞。充分裂解后应没有明显的细胞沉淀。如果细胞量较多，必需分装成50-100万细胞/管，然后再裂解。
3. 充分裂解后，10000-14000g离心3-5分钟，取上清，即可进行后续的page、western和免疫沉淀等操作。
裂解液用量说明：通常6孔板每孔细胞加入150微升裂解液已经足够，但如果细胞密度非常高可以适当加大裂解液的用量到200微升或250微升。
对于组织样品：
1. 把组织剪切成细小的碎片。
2. 融解ripa裂解液，混匀。取适当量的裂解液，在使用前数分钟内加入pmsf，使pmsf的z终浓度为1mm。
3. 按照每20毫克组织加入150-250微升裂解液的比例加入裂解液。（如果裂解不充分可以适当添加更多的裂解液，如果需要高浓度的蛋白样品，可以适当减少裂解液的用量。）
4. 用玻璃匀浆器匀浆，直至充分裂解。
5. 充分裂解后，10000-14000g离心3-5分钟，取上清，即可进行后续的page、western和免疫沉淀等操作。
6. 如果组织样品本身非常细小，可以适当剪切后直接加入裂解液裂解，通过强烈vortex使样品裂解充分。然后同样离心取上清，用于后续实验。直接裂解的优点是比较方便，不必使用匀浆器，缺点是不如使用匀浆器那样裂解得比较充分。
注：ripa裂解液的裂解产物中经常会出现一小团透明胶状物，属正常现象。该透明胶状物为含有基因组dna等的复合物。在不检测和基因组dna结合特别紧密的蛋白的情况下，肿瘤细胞可以直接离心取上清用于后续实验；如果需要检测和基因组结合特别紧密的蛋白，则可以通过超声处理打碎打散该透明胶状物，随后离心取上清用于后续实验。如果检测一些常见的转录因子，例如nf-kappab、p53等时，通常不必进行超声处理，就可以检测到这些转录因子。
对照品 尿苷 20mg 对照品
对照品 环维黄杨星d 20mg 对照品
对照品 苏氨酸 100mg 对照品
对照品 组氨酸 100mg 对照品
对照品 黄山药皂苷提取物 200mg 对照品
对照品 积雪草苷 20mg 对照品
对照品 羟基积雪草苷 20mg 对照品
对照品 甜菜碱 50mg 对照品
对照品 雪上一枝蒿甲素 20mg 对照品
对照品 琥珀酸 20mg 对照品
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