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禽波氏杆菌PCR试剂盒试验温度与时间的设置

基于pcr原理三步骤而设置变性-退火-延伸三个温度点。在标准反应中采用三温度点法,双链dna在90~95℃变性,再迅速冷却至40~60℃,引物退火并结合到靶序列上,然后快速升温至70~75℃,在taq dna聚合酶的作用下,使引物链沿模板延伸。对于较短靶基因(长度为100~300bp时)可采用二温度点法, 除变性温度外、退火与延伸温度可合二为一,一般采用94℃变性,65℃左右退火与延伸(此温度taq dna酶仍有较高的催化活性)。
1、变性温度与时间:
变性温度低,解链不*是导致pcr失败的最主要原因。一般情况下,93℃~94℃min足以使模板dna变性,若低于93℃则需延长时间,但温度不能过高,因为高温环境对酶的活性有影响。此步若不能使靶基因模板或pcr产物*变性,就会导致pcr失败。
2、退火(复性)温度与时间:
退火温度是影响pcr特异性的较重要因素。变性后温度快速冷却至40℃~60℃,可使引物和模板发生结合。由于模板dna比引物复杂得多,引物和模板之间的碰撞结合机会远远高于模板互补链之间的碰撞。退火温度与时间,取决于引物的长度、碱基组成及其浓度,还有靶基序列的长度。对于20个核苷酸,g+c含量约50%的引物,55℃为选择最适退火温度的起点较为理想。引物的复性温度可通过以下公式帮助选择合适的温度:
tm值(解链温度)=4(g+c)+2(a+t)
复性温度=tm值-(5~10℃)
在tm值允许范围内, 选择较高的复性温度可大大减少引物和模板间的非特异性结合, 提高pcr反应的特异性。复性时间一般为30~60sec,足以使引物与模板之间*结合。
3、延伸温度与时间:taq dna聚合酶的生物学活性:
70~80℃150核苷酸/s/酶分子
70℃60核苷酸/s/酶分子
55℃24核苷酸/s/酶分子
高于90℃时,dna合成几乎不能进行。
pcr反应的延伸温度一般选择在70~75℃之间,常用温度为72℃,过高的延伸温度不利于引物和模板的结合。pcr延伸反应的时间,可根据待扩增片段的长度而定,一般1kb以内的dna片段,延伸时间1min是足够 的。3~4kb的靶序列需3~4min;扩增10kb需延伸至15min。延伸时间过长会导致非特异性扩增带的出现。对低浓度模板的扩增,延伸时间要稍长些。
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