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间充质干细胞(MSC)如何培养与鉴定?

相比于胚胎干细胞或神经干细胞,msc具有易获取、易体外培养、传代稳定性、低免疫原性等优势,在体外经过多次传代后仍具有多向分化和自我复制的潜能,且mscs多来自于成年的组织,研究过程的道德和伦理学问题较小。
msc的大小与形状具有异质性,即不同种属或不同组织的msc具有不同的生长形态,例如三极形、长梭形、小圆形、短梭形和扁平形态。几乎所有的msc都是贴壁生长,具有较强的贴壁能力,而msc的原代分离也正是利用了msc强贴壁的特性。例如,骨髓msc的分离方法为:将从组织中分离出来的单个核细胞悬浮培养于含有fbs的培养基中,1~2天后去除非贴壁细胞,保留贴壁细胞再培养2-3周即可获得。此外也可采用免疫磁珠对msc进行分选,但这种方法成本较高。
对于msc的鉴定,常采用的方式包括形态学鉴定,表面标志物鉴定和多系分化潜能鉴定。msc一般呈纤维细胞样生长,细胞在支持物表面呈梭形或不规则三角形生长,细胞*有卵圆形核,胞质向外伸出2-3厘米长短不同的突起。msc的细胞表面标志物则常采用流式细胞仪进行鉴定,不同组织来源的mscs可共享相同的细胞表面标记,如cd29和cd44。但目前我们对msc表面分子标志物的研究还不完善,已发现的表面标志物也存在特异性不强的问题,为了让我们更好地分离、培养和鉴定msc,需进一步不断发现新的特异性标志物。
常见的方法
茜素红染色(成骨诱导)
茜素红s(alizarinreds)钙染色法是一种旨在通过鳌和技术,使钙离子和茜素红s产生复合物,来分析固定处理的细胞样本中橘红色钙沉积现象的经典的技术方法。主要适用于动物原生代或培养细胞的钙沉积和钙化结节检测。广泛用于骨细胞或组织病理生理的研究。操作简捷,性能稳定,显色清晰。
oil red o(油红o)染色(成脂诱导)
作为脂肪细胞的染色剂的原理是使用oil red o 的油溶性,对其它的细胞结构着色性差。成脂肪诱导的过程中,细胞在胞浆中不断有油滴的累积,并不断的增加变大,后整个细胞的胞浆中都是油滴。oil red o染色的方法是对油滴的染色的一种方法。
成软骨诱导(试剂盒)
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